Invent Minute植物组织总蛋白和细胞器分离提取试剂盒

——英文特离心柱法分离提取试剂盒，简单快速，得率高，无需超速离心

北京泽平代理美国进口英文特Invent Biotechnologies品牌Minute离心柱法分离提取试剂盒，用于各类植物组织总蛋白、膜蛋白、叶绿体、类囊体、高尔基体、内质网、内体、微粒体、脂筏、单个细胞核、Rubisco的分离提取，支持新鲜或冷冻的叶片、软茎、根、种子等植物全株样本，并针对高粘性多糖植物提供了优化的提取液配方，适用于包括拟南芥、豌豆、菠菜、油菜在内的各类模式植物和广泛植物研究对象。供应植物总蛋白提取试剂盒、细胞膜蛋白提取试剂盒、植物叶片（叶肉）细胞叶绿体/类囊体（基质）分离提取试剂盒，细胞质与细胞核分离提取试剂盒（核质分离）等，并支持低样本起始量的微量蛋白提取。

Invent离心柱法提取试剂盒，由特殊裂解液+离心管柱+其他配件（研磨棒、蛋白提取粉等）组成，无需煮沸、反复冻融、超速离心，处理方式温和、时间短，植物总蛋白提取时间低至5min，得率高，大量用于生命科学实验室基础研究，如SDS-PAGE、WB（Western Blot）、ELISA、IP免疫沉淀、Co-IP免疫共沉淀、质谱分析、2-D电泳（蛋白双向电泳）、酶活性检测等实验，且无需额外透析或脱盐，下游应用方便灵活。除植物组织提取试剂盒外，Invent还提供动物组织总蛋白和细胞器提取试剂盒、微生物总蛋白和细胞器提取试剂盒，覆盖广泛的生命科学实验室基础研究需求，参考文献丰富。

Invent总蛋白和细胞器提取试剂盒优势

1、样本量低——起始样本量低，得率高，支持珍贵样本提取蛋白质并进行下游检测；
2、蛋白覆盖广——支持提取的蛋白质分子量宽泛，蛋白种类覆盖范围广，应用灵活；
3、蛋白完整——避免RIPA法提取造成的蛋白非等比例丢失问题，获得的蛋白图谱更完整；
4、时间短——总蛋白提取时间低至5min，特别适合磷酸化蛋白的提取；
5、样本丰富——针对不同物种和样本类型，提供针对性优化试剂盒，让提取更高效；
6、选择灵活——提供含表面活性剂、不含表面活性剂不含EDTA的试剂盒，方便获得变性蛋白、天然蛋白进行后续研究。
7、文献丰富——提供详细的中英文Protocol，发表文章超过2100篇，被全球研究者广泛验证。

Invent植物蛋白和细胞亚结构分离提取试剂盒

1、Invent Minute无表面活性剂的植物组织总蛋白提取试剂盒

概述：Invent Minute植物组织总蛋白提取试剂盒无表面活性剂，由优化的细胞裂解液和0.6mL离心柱组成，能够迅速从植物组织（叶片、种子、软茎等）中提取无表面活性剂的水溶性蛋白。试剂盒中的裂解液不含任何表面活性剂和有机溶剂。本试剂盒采用离心柱技术提取蛋白质，样品量可低至50μL，高限可达500μL，从植物组织中提取总蛋白质小于8min，得率可达1~6mg/mL。

应用：SDS-PAGE、immunoblottings、ELISA等。

优势：

①速度快，操作简单；
②小样本量，低至50μL；
③无蛋白丢失，高得率；
④无需超声处理、 煮沸、 或反复冻融；
⑤不含任何表面活性剂和有机溶剂。

2、Invent Minute植物膜蛋白提取试剂盒

概述：植物膜蛋白占植物细胞总蛋白的很小一部分，但在植物生理学中起着非常重要的作用。传统的植物膜蛋白分离纯化方法是蔗糖密度梯度离心法和双液相法。这些方法虽然有效，但需要超速离心和大量的起始原材料，操作过程十分繁琐和费时。Invent Minute试剂盒解决了植物膜蛋白提取中的难点，使用时植物组织首先通过缓冲液A致敏，匀浆，然后通过离心柱，在此过程中，匀浆的组织通过柱子特有的Z字形通路后，细胞膜被切割成大小相等的碎片，后续无需超速离心，仅需通过差速离心和密度离心，可将天然的质膜蛋白从未破裂的细胞、细胞核、细胞质和细胞器的混合物中分离出来。在每次实验中仅需使用相同量的起始材料、离心力和离心时间，即可高度富集膜蛋白，并呈现高一致性。整个操作过程大约1小时。

应用：SDS-PAGE、immunoblottings、ELISA、IP、膜蛋白质结构分析、2-D、酶活性测定等。

3、Invent Minute植物组织总蛋白提取试剂盒

概述：Invent Minute植物组织总蛋白提取试剂盒，由优化细胞裂解液和0.6mL离心柱组成，能够迅速从植物组织（叶片、种子、柔软的茎和根等）中提取总蛋白。试剂盒同时提供天然裂解液和变性裂解液，适用于不同下游实验。利用离心柱提取技术，Invent试剂盒可从20~200mg植物组织中提取总蛋白质，操作时间5~8min，得率可达2~8mg/mL。

应用：SDS-PAGE、immunoblottings、ELISA、IP、蛋白质分析和小规模蛋白层析纯化。

优势：

①速度快，操作简单，一管式操作；
②适用于不同的植物组织；
③可兼容小样本量；
④使用柱式法及优化的裂解液配方，无蛋白丢失，高得率；
⑤无需超声处理、 煮沸、 或反复冻融；
⑥可选择提取天然或变性的蛋白质，兼容各类下游实验。

4、Invent Minute类囊体富集和叶绿体组分分离试剂盒

概述：叶绿体是质体的一种，由两层膜包围，是光合作用的场所。光合作用的功能是建立在囊状结构薄膜类囊体、以及叶绿体基质中酶的基础上。类囊体膜在结构上与叶绿体膜不同，其形成取决于叶绿体被膜特殊的生物合成和运输活动。Invent Minute试剂盒利用离心柱技术和差速离心（无需超速离心），可将叶绿体分为类囊体膜、被膜和基质三部分，分离的类囊体以天然形式存在，可用于功能研究和蛋白质亚细胞定位研究（使用Western blotting/质谱等），试剂盒中的缓冲液不含表面活性剂和EDTA，操作时间大约1小时。

5、Invent Minute粘性植物叶绿体分离试剂盒

概述：大多数植物含有大量的多糖和多酚，其中水胶体粘液是一种复杂的黏多糖，在溶液中释放时表现出高粘度。高粘多糖植物样品匀浆时会变得非常粘稠，干扰细胞组分分离和细胞器纯化，如叶绿体和细胞核的分离实验。Invent Minute试剂盒可简单、快速地从粘性植物中分离叶绿体，操作时间约30min。

应用：生化分析、SDS-PAGE、immunoblottings、叶绿体酶测定等，也可作为RNA和DNA纯化起始材料用于分子生物学研究。

6、Invent Minute植物胞浆和胞核分离试剂盒

概述：Invent Minute试剂盒用于对新鲜或冷冻的柔软植物组织进行细胞组分分离。与其他商用试剂盒以及实验室常用方法不同，本试剂盒仅需要100~200mg的起始材料，通过离心柱技术配合特殊缓冲系统，1h左右可将样品分离成胞浆、细胞核、叶绿体和微粒体四个组分。本试剂盒使用时，研磨组织以释放植物细胞，然后快速通过离心柱破坏细胞膜，通过差速离心得到不同的细胞组分，操作中只需使用台式离心机。本试剂盒已被验证用于多种样品，如拟南芥、菠菜、豌豆和油菜等。

应用：分离的组分可用于多种应用，包括蛋白质转运研究、核蛋白提取和核酸纯化/测序等。分离出的高纯度核可用于蛋白质组学、流式细胞术分析、DNA测序、蛋白质-蛋白质和蛋白质-DNA相互作用研究。

7、Invent Minute植物高尔基体富集试剂盒

概述：植物高尔基体在细胞生理结构和蛋白转运中起着重要作用，然而高尔基体蛋白质组学的研究受限于缺乏高效获取富集高尔基体的方法。传统高尔基体分离方法高度依赖剧烈匀浆和密度梯度离心，这些方法既繁琐又费时，通常还需要大量的起始原料。Invent Minute试剂盒使用基于离心柱的匀浆方法，通过差速离心和选择性沉淀，可实现从植物中富集高尔基体，操作简便、快速直接，只需要毫克量的起始原料，完成高尔基体2~3倍富集，相比传统的分离方法更好地保持高尔基体的结构完整性，更适合下游的生化、蛋白质组学和功能分析。

应用：SDS-PAGE、immunoblottings、ELISA、IP、膜蛋白质结构分析、2-D、酶活性测定等。

8、Invent Minute植物内体富集试剂盒

概述：内体是细胞表面胞吞物质分选和转运、以及高尔基体向溶酶体或液泡运输过程中的一个重要细胞器。在植物细胞中，已经确定了两个明确定义的内体：反式高尔基体网络（等效于早期内体）和多泡体（等效于晚期内体）。传统分离和纯化这两个部分采用蔗糖梯度离心方法，操作十分繁琐、费时。某些情况下，也会采用蔗糖梯度分离与免疫亲和相结合的方法，但通常需要大量的起始样品（10~50g）。Invent Minute基于离心柱和选择性沉淀的内体富集试剂盒，方法简单、快速，只需少量的起始样品。

应用：SDS-PAGE、immunoblottings、ELISA、IP、膜蛋白质结构分析、2-D、酶活性测定等。

9、Invent Minute植物内质网富集试剂盒

概述：植物内质网（ER）的分离和富集对于阐明内质网相关细胞功能至关重要。在动物细胞中，内质网与微管紧密相连，和高尔基体聚集在微管组织中心。在植物细胞中，内质网与肌动蛋白微丝相连，在细胞核附近未发现微管组织中心。由于植物内质网的结构特性，分离/富集植物内质网比动物样品更难。传统的内质网分离方法既繁琐又费时。Invent Minute植物内质网富集试剂盒特别为植物样品设计，可在1小时左右从植物叶片样品中富集1~3倍的内质网组分，且基本不含高尔基体污染，富集后的内质网组分可用于植物蛋白质转运研究。

应用：SDS-PAGE、immunoblottings、ELISA、IP、膜蛋白质结构分析、2-D、酶活性测定等。

10、Invent Minute植物微粒体分离试剂盒

概述：从植物中分离微粒体是实验室中常见实验，微粒体中富含细胞膜、内质网、高尔基体、液泡膜和其他膜结构。传统的分离方法需要大量的样品量，通过超速离心分离不同的膜结构，步骤复杂。Invent Minute试剂盒提供了一种快速、简单、无需特殊仪器的分离方法，只需很小的样品量（200mg）即可提取。本试剂盒优化的缓冲液系统，通过简单的离心可分离水溶性胞浆蛋白和非水溶性微粒体，特别是细胞膜部分，操作时间<1小时，蛋白质得率可达100~200μg/样品。

应用：SDS-PAGE、WB、ELISA、IP、酶活性检测、蛋白质组学及膜转运分析。

优势：

①简单，快速，性价比高；
②得率高；
③小样品量；
④无需其他仪器。

11、Invent Minute植物叶绿体分离试剂盒

概述：Invent Minute叶绿体分离试剂盒中包含优化的叶绿体提取缓冲液和2.0mL离心柱，利用带孔径的离心柱技术可以快速从新鲜的植物组织中（叶片、种子、软茎等）提取完整的叶绿体。相比传统方法需要1~10g组织来提取叶绿体，Invent试剂盒可以从100~200mg新鲜植物叶片中，快速提取1×106⁶~1×10⁷的完整叶绿体（>90%完整），操作时间<5min。提示：如样品是含多糖多酚较多的粘性植物，可选货号CF-053。

应用：生化分析、SDS-PAGE、immunoblottings、叶绿体酶测定等，也可作为叶绿体RNA和DNA纯化起始材料用于分子生物学研究。

优势：

①简单，快速，性价比高；
②得率高；
③小样品量；
④适用于筛选或下游应用，如叶绿体DNA提取。

12、Invent Minute植物脂筏分离试剂盒

概述：在动物和植物膜系统中都存在抗去污剂膜（DRM）的亚结构域，即脂筏。脂筏增加了鞘脂蛋白的比例和胆固醇浓度，在真核细胞的信号转导和蛋白质转运中起着重要作用。传统分离脂筏的方法包括非离子去污剂提取，使用蔗糖梯度超速离心，这种方法需要大量的起始样品（数百克），耗时，还需要专用设备。Invent Minute植物组织快速分离提取脂筏试剂盒，仅需毫克级的起始样品，无需超速离心，约1小时即可完成脂筏的分离。

应用： SDS-PAGE、immunoblottings、ELISA、IP、膜蛋白质结构分析、2-D、酶活性测定等。

13、Invent Minute植物组织单个细胞核分离试剂盒

概述：单个细胞核已成为基因组学和蛋白质组学的理想材料，然而从植物组织中分离高质量的单个细胞核非常具有挑战性，大多数方法仅限于特定组织或物种，没有标准的操作方法和缓冲体系来处理不同物种的所有组织类型，对于不同的样本，可能需要进行较多的优化。传统的分离方法经常导致分离的细胞核结块或聚集，难以应用于单核RNA测序和ATAC分析。Invent Minute试剂盒利用离心柱技术和特殊缓冲液体系，可以快速从模式植物和常规研究植物组织中分离出完好的单个细胞核，并大大减少结块聚集，而且仅需150~200mg的起始材料，操作只需要大约30min。

应用：单核RNA测序和ATAC分析、流式细胞仪分析、染色体免疫共沉淀（芯片）、免疫荧光染色，也可以作为DNA、RNA、蛋白质和其他细胞成分的分离纯化的起始原料。

14、Invent Minute植物Rubisco去除试剂盒

概述：植物主要通过叶片来感知环境信号，科学界的一个主要目标是通过对叶片蛋白组的分析，研究信号级联的组成部分。目前研究的主要瓶颈为一种高丰度蛋白质——Rubisco，它占叶片蛋白的40~80%，用LC-MS/MS进行蛋白质的表达和鉴定时，高丰度的Rubisco会掩盖低丰度蛋白质的检测。一种特殊的IgY共轭树脂可用于从总蛋白提取物中去除Rubisco，但只能处理少量的蛋白质，并且非常昂贵，其他方法则比较繁琐和耗时。Invent Minute Rubisco去除试剂盒使用离心柱技术和特殊的Rubisco去除缓冲液，简单、直接，可在约1小时内完成。

应用：SDS-PAGE、2DE和LC-MS/MS分析等。

应用Invent植物蛋白或细胞器提取试剂盒发表的部分文章

1. Jo, S. H., Jung, S., Lee, M. H., Hwang, I., & Park, J. M. (2026). Shigella effector VirA suppresses plant immunity by compromising PRA1.F3‐dependent accumulation of FLS2 at the plasma membrane. Plant, Cell & Environment, 49(8), 5267–5282. https://doi.org/10.1111/pce.70541
2. Kan, Y., Mu, X.-R., Qu, F., Dai, Z.-A., Gao, J., Liu, N.-J., Li, S., Shan, J.-X., Ye, W.-W., Dong, N.-Q., Huang, X., Yang, Y.-B., Guo, S.-Q., Lei, J.-J., Cao, Y.-J., Zhou, J.-F., Li, P., Wang, J., Li, Y., … Lin, Y. (2025). A stepwise decoding mechanism for heat sensing in plants connects lipid remodeling to a nuclear signaling cascade. Cell, 188(26), 7378-7396.e23. https://doi.org/10.1016/j.cell.2025.11.003
3. Zhang, S., Feng, M., Chen, W., Zhou, X., Lu, J., Wang, Y., Li, Y., Jiang, C.-Z., Gan, S.-S., Ma, N., & Gao, J. (2019). In rose, transcription factor PTM balances growth and drought survival via PIP2;1 aquaporin. Nature Plants, 5(3), 290–299. https://doi.org/10.1038/s41477-019-0376-1
4. Hou, J., Lu, P., Cui, X., Luo, L., Pan, Q., & Li, J. (2026). MDP25‐VDAC3 complex orchestrates actin remodeling and mitochondrial dynamics to modulate innate immunity in arabidopsis. Advanced Science, 13(14), e13442. https://doi.org/10.1002/advs.202513442
5. Tsakiri, D., Kotsaridis, K., Michalopoulou, V. A., Zhang, N., Marinos, S., Kountourakis, N., Kokkinidis, M., Martin, G. B., & Sarris, P. F. (2025). Subcellular targets and recognition mechanism of ralstonia solanacearum effector RipE1. iScience, 28(5), 112307. https://doi.org/10.1016/j.isci.2025.112307
6. Wu, X., Lin, T., Zhou, X., Zhang, W., Liu, S., Qiu, H., Birch, P. R. J., & Tian, Z. (2024). Potato <span style="font-variant:Small-caps;">E</span> 3 ubiquitin ligase S t RFP 1 positively regulates late blight resistance by degrading sugar transporters S t SWEET10 c and S t SWEET 11. New Phytologist, 243(2), 688–704. https://doi.org/10.1111/nph.19848
7. Ge, S., Wang, S., Liu, X., Cheng, L., Li, R., Liu, Y., Cai, Y., Meng, S., Tan, C., Jiang, C.-Z., Qi, M., Li, T., & Xu, T. (2025). Calcium-responsive phosphorylation of SlLHP1b epigenetically suppresses auxin synthesis to control drought-induced flower drop in tomato. Developmental Cell, 60(20), 2730-2743.e9. https://doi.org/10.1016/j.devcel.2025.05.006
8. Ma, H., Kong, Y., Geng, C., Tian, Y., Jiang, J., Yan, Z., & Li, X. (2025). RabE1a‐ and SEC10b‐mediated exocytosis and AP2β‐mediated endocytosis are involved in the intracellular transport of tobamoviruses. Plant Biotechnology Journal, 23(8), 3237–3253. https://doi.org/10.1111/pbi.70138
9. Shao, G., Liu, Q., Zhang, X., Zhao, H., Gao, W., Tian, S., Liu, Z., Wang, Q., Gu, B., & Liu, X. (2026). GmEBS7a-E2 complex dissociation hyperactivates ERAD to impair plant immunity against phytophthora pathogens. Immunology. https://doi.org/10.64898/2026.01.25.701614
10. Wang, Z., Han, L., Gao, L., Zhang, L., Xie, Y., Liu, H., Fan, J., Wu, M., Yue, N., Wang, Y., Han, M., Sun, T., Ding, Q., Zheng, X., Cao, J., Shen, X., Wang, H., Aizitili, T., Wu, C., … Liu, Y. (2026). Genetic basis of phytoalexin-mediated chemical defense in plants. Cell, 189(13), 4059-4074.e20. https://doi.org/10.1016/j.cell.2026.04.021
11. Zhou, Y., Liang, X., & Liang, J. (2025). BAM1/2-mediated phosphorylation of ABCG16 reduces its stability and ABA export activity to suppress root growth in arabidopsis. Plant Communications, 6(12), 101623. https://doi.org/10.1016/j.xplc.2025.101623
12. Wang, J., Hu, M., Wang, J., Qi, J., Han, Z., Wang, G., Qi, Y., Wang, H.-W., Zhou, J.-M., & Chai, J. (2019). Reconstitution and structure of a plant NLR resistosome conferring immunity. Science, 364(6435), eaav5870. https://doi.org/10.1126/science.aav5870
13. Fu, X., Shi, Z., Jiang, Y., Jiang, L., Qi, M., Xu, T., & Li, T. (2019). A family of auxin conjugate hydrolases from solanum lycopersicum and analysis of their roles in flower pedicel abscission. BMC Plant Biology, 19(1), 233. https://doi.org/10.1186/s12870-019-1840-9
14. Zhou, K., Wu, F., Deng, L., Xiao, Y., Yang, W., Zhao, J., Wang, Q., Chang, Z., Zhai, H., Sun, C., Han, H., Du, M., Chen, Q., Yan, J., Xin, P., Chu, J., Han, Z., Chai, J., Howe, G. A., … Li, C. (2025). Antagonistic systemin receptors integrate the activation and attenuation of systemic wound signaling in tomato. Developmental Cell, 60(4), 535-550.e8. https://doi.org/10.1016/j.devcel.2024.11.005
15. Wang, Q., Li, Y., Ishikawa, K., Kosami, K., Uno, K., Nagawa, S., Tan, L., Du, J., Shimamoto, K., & Kawano, Y. (2018). Resistance protein pit interacts with the GEF OsSPK1 to activate OsRac1 and trigger rice immunity. Proceedings of the National Academy of Sciences, 115(49). https://doi.org/10.1073/pnas.1813058115
16. Waghmare, S., Xia, L., Ly, T. P., Xu, J., Farami, S., Burchmore, R., Blatt, M. R., & Karnik, R. (2024). SYNTAXIN OF PLANTS 132 underpins secretion of cargoes associated with salicylic acid signaling and pathogen defense. Plant Physiology, 197(1), kiae541. https://doi.org/10.1093/plphys/kiae541
17. Li, P.-C., Li, K., Wang, J., Zhao, C.-Z., Zhao, S.-Z., Hou, L., Xia, H., Ma, C.-L., & Wang, X.-J. (2019). The AAA-ATPase MIDASIN 1 functions in ribosome biogenesis and is essential for embryo and root development. Plant Physiology, 180(1), 289–304. https://doi.org/10.1104/pp.18.01225
18. Shabek, N., Ticchiarelli, F., Mao, H., Hinds, T. R., Leyser, O., & Zheng, N. (2018). Structural plasticity of D3–D14 ubiquitin ligase in strigolactone signalling. Nature, 563(7733), 652–656. https://doi.org/10.1038/s41586-018-0743-5
19. Wang, H., Liu, Y., Zhang, M., Fang, R., & Yan, Y. (2025). A receptor-like kinase recognizes viral proteins at the trans-golgi network/early endosome and inhibits infection in rice. Cell Discovery, 11(1), 101. https://doi.org/10.1038/s41421-025-00847-4
20. Jing, W., Gong, F., Liu, G., Deng, Y., Liu, J., Yang, W., Sun, X., Li, Y., Gao, J., Zhou, X., & Ma, N. (2023). Petal size is controlled by the MYB73/TPL/HDA19-miR159-CKX6 module regulating cytokinin catabolism in rosa hybrida. Nature Communications, 14(1), 7106. https://doi.org/10.1038/s41467-023-42914-y
 

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